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Prevenção e Tratamento de Infecções Respiratórias Nosocomiais: CCIH - HMMC, Notas de estudo de Cultura

Centro Universitário de Ensino Superior do Amazonas (CIESA)Cultura

Documento que apresenta definições, patogenia, fatores de risco, germes mais frequentes e tratamento para infecções respiratórias nosocomiais, além de recomendações para prevenção. Inclui informações sobre pneumonia, ventiladores mecânicos e traqueostomia.

Tipologia: Notas de estudo

2022

Compartilhado em 07/11/2022

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CCIH - HMMC Julho/01
INFECÇÃO RESPIRATÓRIA NOSOCOMIAL
Definição:
• Pneumonia adquirida após 48 horas de internação.
Patogenia:
• Microaspirações de orofaringe ⇒ principal mecanismo.
• Broncoaspiração do conteúdo gástrico ou esofageano.
• Inoculação direta das vias aéreas na entubação traqueal.
• Inalação de aerossol infectado.
• Disseminação hematogênica.
Fatores de Risco:
• Idade ⇒ neonatos e idosos.
• Entubação oro-traqueal.
• Ventilação mecânica.
• Uso de antiácidos, bloqueadores H2 ou bloqueadores de bombas de prótons
• Sonda nasogástrica ou nasoenteral.
• Doença grave de base.
• Coma.
• Trauma.
• Desnutrição.
• Hospitalização prolongada.
• Sedação.
• Imunossupressão.
• Intervenções cirúrgicas toracoabdominais.
• Antibioticoterapia prévia.
• Cabeceira baixa.
• Equipamento contaminado de assistência ventilatória.
• Manipulação contaminada pela equipe de saúde.
Diagnóstico:
• Radiografia de tórax : infiltrado novo ou progressivo, associado a início de escarro purulento ou
mudança na característica do escarro.
• Hemocultura ⇒ 03 amostras de 10 ml (aproximadamente 15% de positividade).
• Gram/BAAR/cultura do escarro ou aspirado traqueal.
• Broncoscopia e LBA com cateter protegido: Gram, BAAR e cultura quantitativa (considerar 104
ufc/ml).
• Broncoscopia e escovado com cateter protegido: Gram, BAAR e cultura quantitativa (considerar
103 ufc/ml).
• Tomografia computadorizada de tórax.
Germes mais freqüentes:
pf3
pf4
pf5
pf8

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Baixe Prevenção e Tratamento de Infecções Respiratórias Nosocomiais: CCIH - HMMC e outras Notas de estudo em PDF para Cultura, somente na Docsity!

INFECÇÃO RESPIRATÓRIA NOSOCOMIAL

Definição:

  • Pneumonia adquirida após 48 horas de internação.

Patogenia:

  • Microaspirações de orofaringe ⇒ principal mecanismo.
  • Broncoaspiração do conteúdo gástrico ou esofageano.
  • Inoculação direta das vias aéreas na entubação traqueal.
  • Inalação de aerossol infectado.
  • Disseminação hematogênica.

Fatores de Risco:

  • Idade ⇒ neonatos e idosos.
  • Entubação oro-traqueal.
  • Ventilação mecânica.
  • Uso de antiácidos, bloqueadores H 2 ou bloqueadores de bombas de prótons
  • Sonda nasogástrica ou nasoenteral.
  • Doença grave de base.
  • Coma.
  • Trauma.
  • Desnutrição.
  • Hospitalização prolongada.
  • Sedação.
  • Imunossupressão.
  • Intervenções cirúrgicas toracoabdominais.
  • Antibioticoterapia prévia.
  • Cabeceira baixa.
  • Equipamento contaminado de assistência ventilatória.
  • Manipulação contaminada pela equipe de saúde.

Diagnóstico:

  • Radiografia de tórax : infiltrado novo ou progressivo, associado a início de escarro purulento ou mudança na característica do escarro.
  • Hemocultura ⇒ 03 amostras de 10 ml (aproximadamente 15% de positividade).
  • Gram/BAAR/cultura do escarro ou aspirado traqueal.
  • Broncoscopia e LBA com cateter protegido: Gram, BAAR e cultura quantitativa (considerar 10^4 ufc/ml).
  • Broncoscopia e escovado com cateter protegido: Gram, BAAR e cultura quantitativa (considerar 10 3 ufc/ml).
  • Tomografia computadorizada de tórax.

Germes mais freqüentes:

Microbiologia Porcentagem Cocos Gram positivos: S. aureus 20 - 40 S. pneumoniae 5 - 20

Bacilos Gram negativos: 20 - 60 Pseudomonas aeruginosa Enterobacter spp. Acinetobacter spp. Klebsiella pneumoniae Serratia marcescens E.coli

Cocobacilos Gram negativos Haemophilus influenzae 5 - 15

Bactérias anaeróbicas 0 - 35

Patógenos especiais Legionella pneumophila 0 - 10

Mycobacteria spp. < 1

Vírus Influenza A e B < 1 Vírus Sincicial Respiratório < 1

Fungos Aspergillus spp. < 1 Candida spp. < 1 Pneumocystis carinii < 1

ROTINA DE PREVENÇÃO DE INFECÇÃO RESPIRATÓRIA EM PACIENTES EM

ASSISTÊNCIA VENTILATÓRIA

I. Esterilização e desinfecção dos equipamentos e dispositivos:

1. Ventiladores mecânicos: - Não esterilizar ou desinfectar as partes internas do aparelho. Seguir orientações do fabricante 2. Circuitos e umidificadores de ventiladores mecânicos: - Não trocar os circuitos e umidificadores, quando utilizados, até a alta do paciente do ventilador mecânico, quando utilizados umidificadores higroscópicos, exceto quando com sujidade aparente. - Esterilizar em óxido de etileno ou autoclavar, quando o material for apropriado para esta técnica. - Drenar e descartar o condensado que se forma no circuito, quando utilizados umidificadores. Tomar cuidado para não drenar o condensado para a cânula ou tubo oro-traqueal. Lavar as mãos antes e após este procedimento. - Utilizar água estéril no umidificador. 3. Circuitos de ventiladores com filtros hidrofóbicos ou higroscópicos: - Utilizar preferencialmente filtro hidrofóbicos. - Trocar os filtros a cada dois dias. Avaliar de acordo com filtro utilizado. - Não umidificar o circuito quando utilizar filtros. 4. Umidificadores de parede: - Trocar os umidificadores entre cada paciente. - Utilizar somente água estéril no umidificadores. - Não manter umidificador com água quando não utilizado. 5. Nebulizadores de pequeno volume: - Trocar nebulizadores entre cada nebulização no mesmo paciente. - Realizar desinfecção de alto nível com Hipoclorito de Sódio 1% ou Glutaraldeído 2%. - Utilizar somente soluções estéreis para nebulização. 6. Macronebulizadores: - Trocar a cada 24 horas. - Utilizar apenas água estéril.

  • Realizar desinfecção de alto nível com Hipoclorito de Sódio 1% ou Glutaraldeído 2%. 7. Bolsas de ressuscitação (Ambús):
  • Manter um Ambú por paciente nas áreas críticas (UTI, por exemplo).
  • Realizar desinfecção de alto nível entre cada paciente. 8. Carros de anestesia e seus circuitos:
  • Não esterilizar ou desinfectar as partes internas do aparelho.
  • Esterilizar em óxido de etileno ou autoclavar, quando de material apropriado para esta técnica os circuitos, máscaras faciais, bolsa de ventilação e peças em “Y” entre cada paciente.
  • Em caso de uso de filtros, trocar circuitos semanalmente e filtros diariamente, exceto nos pacientes com Tuberculose. Neste caso, trocar após uso.
  • Drenar e descartar o condensado que se forma no circuito, quando utilizados umidificadores. Tomar cuidado para não drenar o condensado para a cânula ou tubo oro-traqueal. Lavar as mãos após este procedimento.

II. Interrupção da transmissão pessoa – pessoa de microrganismos:

1. Lavagem de mãos: - Lavar as mãos antes e após cada procedimento e entre pacientes. - Lavar as mãos com água e sabão líquido sem anti-séptico após manusear secreções respiratórias ou material contaminado com secreção, mesmo tendo utilizado luvas. - Lavar as mãos ao manusear paciente com tubo oro-traqueal ou traqueostomia, mesmo tendo utilizado luvas. 2. Método de barreira: - Utilizar luvas ao manusear secreções respiratórias dos pacientes. - Trocar luvas entre cada paciente e ao manusear outra área do corpo e o trato respiratório no mesmo paciente. - Utilizar capotes quando manusear grande quantidade de secreção respiratória (aspiração de pacientes com muita secreção, por exemplo). 3. Cuidados com traqueostomia: - Realizar traqueostomia com técnica asséptica com utilização de barreira máxima. - Trocar cânula de traqueostomia com técnica asséptica, com cânula estéril.

4. Pacientes em pós operatório: - Orientar os pacientes a realizarem tosse com freqüência, inspiração profunda e deambular precocemente. - Controlar dor que impeça a tosse ou inspiração profunda com analgesia sistêmica, inclusive com auto-aplicação, com drogas de menor efeito de supressão de tosse possível ou com analgesia regional. - Utilizar espirômetros para pacientes com risco aumentado de pneumonia pós- operatória. 5. Outras medidas profiláticas: - Vacinar com vacina anti-pneumocócica os pacientes de risco para doença pneumocócica como: idade ≥ 65 anos, DPOC, cardiopatas crônicos, diabetes mellitus, alcoólatras, cirróticos, portadores de fístula liquórica e pacientes imunodeprimidos ou com asplenia anatômica ou funcional.

TÉCNICA DE ASPIRAÇÃO ENDOTRAQUEAL (SISTEMA ABERTO)

  • Material necessário:
  1. Sonda de aspiração descartável.
  2. Luva estéril.
  3. Frasco com água estéril de 100 ml.
  4. Seringa descartável de 10 ml.
  5. Gaze estéril.
  6. Ambú.
  • Técnica:
  1. Lavar as mãos com água e sabão sem anti-séptico.
  2. Explicar ao paciente o procedimento.
  3. Abrir o frasco de água estéril com técnica asséptica.
  4. Abrir o pacote da sonda de aspiração.
  5. Adaptar a sonda ao bico intermediário do aspirador, mantendo o restante protegido dentro do invólucro.
  6. Calçar a luva na mão dominante.
  7. Abrir a rede de vácuo (mão sem luva).
  8. Umidificar a sonda.
  9. Caso seja necessário fazer instilação no tubo, injetar 3 a 5 ml. de água estéril no TOT ou cânula.
  10. Inserir a sonda pinçada, aproximadamente 15 a 20 cm. através do TOT ou cânula aspirando delicadamente e com rapidez.
  11. Aplicar a sucção por 2 a 3 segundos apenas, em cada etapa da técnica.
  12. Retirar a sonda com movimentos rotatórios.
  13. Repetir o procedimento se necessário.
  14. Lavar o intermediário com o restante da água estéril.
  15. Oxigenar o paciente se necessário.
  16. Fechar o vácuo.
  17. Desconectar a sonda, desprezando-a juntamente com a luva.
  18. Proteger ponta do intermediário com gaze.
  19. Lavar as mãos.
  20. Anotar o procedimento no impresso apropriado.