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Guias e Dicas
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Fundamentos do Laboratório clínico e Coleta de manipulação de amostra biológica, Manuais, Projetos, Pesquisas de Biomedicina

Roteiro de hemato, Imuno, Sumário de Urina, fezes

Tipologia: Manuais, Projetos, Pesquisas

2022

Compartilhado em 08/08/2023

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kelly-heloisa 🇧🇷

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UNIVERSIDADE DE SÃO PAULO- FACULDADE DE MEDICINA
VETERINÁRIA E ZOOTECNIA
DEPARTAMENTO DE CLÍNICA MÉDICA
VCM 311 - Patologia Clínica Veterinária
Roteiro de aula prática HEMATOLOGIA CLÍNICA
HEMOGRAMA
ERITROGRAMA
1. Hematócrito (Volume Globular) - %
Homogeneizar a amostra de sangue
Preencher aproximadamente 3/4 do tubo capilar com sangue
Obstruir uma das extremidades (com massa ou fogo)
Centrifugar no microcentrifugador (13000 g) por 5 minutos (caprinos: 15 minutos).
Usar tabela para relacionar o volume de eritrócitos com o volume total da amostra
de sangue contida no tubo capilar = Ht %.
OBS: Sempre avaliar o aspecto do plasma (ictérico, lipêmico, hemolisado).
2. Dosagem de Hemoglobina - g/dL
Em três tubos de ensaio de 10 mL devidamente identificados serão aferidos o Branco
de reagentes, o Padrãocom concentração conhecida de hemoglobina e a Amostraa
ser analisada:
Tubos
Branco
Padrão
Amostra
Reativo de Drabkin ou água
destilada
5,0 mL
5,0 mL
5,0 mL
Padrão (ex:10 g/dL)
KCn - VENENO!
---
20 µL
---
Sangue
---
---
20 µL
Homogeneizar e aguardar pelo menos 10 minutos (temperatura ambiente)
Leitura em espectrofotômetro ou fotocolorímetro ( = 540 nm)
Resultado: AbsP --- ConcP ConcA = AbsA . ConcP g/dL
AbsA --- ConcA AbsP
3. Contagem de Eritrócitos (hemácias)
A contagem do número total de eritrócitos por mm3 pode ser feita manualmente
em hemocitômetro (câmara de Neubauer) ou por contadores automáticos.
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UNIVERSIDADE DE SÃO PAULO- FACULDADE DE MEDICINA

VETERINÁRIA E ZOOTECNIA

DEPARTAMENTO DE CLÍNICA MÉDICA

VCM 311 - Patologia Clínica Veterinária

Roteiro de aula prática

HEMATOLOGIA CLÍNICA

HEMOGRAMA

ERITROGRAMA

1. Hematócrito (Volume Globular) - %

 Homogeneizar a amostra de sangue  Preencher aproximadamente 3/4 do tubo capilar com sangue  Obstruir uma das extremidades (com massa ou fogo)  Centrifugar no microcentrifugador (13000 g) por 5 minutos (caprinos: 15 minutos).  Usar tabela para relacionar o volume de eritrócitos com o volume total da amostra de sangue contida no tubo capilar = Ht %.

OBS: Sempre avaliar o aspecto do plasma (ictérico, lipêmico, hemolisado).

2. Dosagem de Hemoglobina - g/dL

Em três tubos de ensaio de 10 mL devidamente identificados serão aferidos o “Branco” de reagentes, o “Padrão” com concentração conhecida de hemoglobina e a “Amostra” a ser analisada:

Tubos Branco Padrão Amostra Reativo de Drabkin ou água destilada

5,0 mL 5,0 mL 5,0 mL

Padrão (ex:10 g/dL) KCn - VENENO! ---^ 20 μL^ --- Sangue --- --- 20 μL

 Homogeneizar e aguardar pelo menos 10 minutos (temperatura ambiente)  Leitura em espectrofotômetro ou fotocolorímetro ( = 540 nm)

Resultado: AbsP --- ConcP ConcA = AbsA. ConcP g/dL AbsA --- ConcA AbsP

3. Contagem de Eritrócitos (hemácias)

A contagem do número total de eritrócitos por mm^3 pode ser feita manualmente em hemocitômetro (câmara de Neubauer) ou por contadores automáticos.

3.1. Diluição da amostra

Amostra: sangue com EDTA Diluidores: Líquido de Gower ou Solução Fisiológica.

3.1.1. Microdiluição

Diluição 1:200 em pipeta hematimétrica para glóbulos vermelhos

Técnica:

  • Homogeneizar o sangue;
  • Aspirar o sangue até a marca 0,5 da pipeta de Thoma para glóbulos vermelhos;
  • Limpar o sangue da parte externa da pipeta;
  • Aspirar a solução diluidora até a marca 101;
  • Agitar
  • Desprezar as primeiras gotas e preencher a câmara de Neubauer

3.1.2. Macrodiluição Diluição 1:201 utilizando pipeta automática

Técnica:

  • Em um tubo, colocar 4 mL de diluidor
  • Homogeneizar o sangue;
  • Pipetar 20 μL de sangue
  • Homogeneizar
  • Preencher a câmara de Neubauer

4.2. Contagem:

Aguardar a sedimentação das hemácias e ao colocar a câmara no microscópio, não inclinar muito para que as células, por gravidade, não se desloquem para um lado só. Focar o retículo de contagem em menor aumento (4x) e passar para as objetivas de 10x e, depois, 40x. Contar as hemácias de cinco quadrados (4 cantos e 1 central) da área central da câmara, delimitados pelas linhas triplas (do total de 25 quadrados=1 mm^2 ). São incluídas hemácias que estejam sobre dois lados da linha tripla (regra do “L”) e que encostem até a segunda linha. Quanto aos outros dois lados, ignorar as hemácias que encostarem na primeira linha interna. Multiplicar o resultado pelo respectivo fator de correção, calculado a partir do método utilizado (micro ou macrodiluição).

Fator de Correção O fator de correção é calculado com base na :  diluição ( 200 ou 201 )  área da câmara onde as células foram contadas (fazer o cálculo para completar 1 mm^2 – multiplicar por 5 )  altura da câmara (0,1 mm – para corrigir para 1 mm, multiplicar por 10 ). (observar ilustração no fim do roteiro)

Nº de hemácias por mm^3 (μL)= nº de hemácias contadas X Fator de Correção

5. Esquema da Câmara Hematimétrica de Neubauer Modificada

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1 mm

1 mm