Exame Parasitológico de Fezes.pdf, Exercícios de Raios-X

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EXAME

PARASITOLÓGICO DE

FEZES

Profa Msc Melissa kayser

Exame de fezes

1 - Receber as fezes em recipiente adequado. 2 - As amostras devem ser correta e completamente identificadas com:

• O nome do paciente; idade, número de identificação do laboratório; hora da colheita e hora da chegada da amostra ao laboratório.
• As instruções, sobre a coleta de fezes devem ser claras e passadas ao paciente.
• É importante verificar se o paciente as entendeu, pois é na coleta adequada que se inicia a qualidade do exame parasitológico.

Exame de fezes

5 - Fezes líquidas devem ser examinadas dentro de 30 minutos; semi-sólidas dentro de 1 hora e formadas dentro de 24 horas. Se o exame for realizado depois de 24 horas a amostra deve ser mantida em conservadores tais como:

• Formol a 10 %;
• Álcool polivinílico (PVA);
• MIF conservador muito difundido, composto de mertiolato ou mercurocromo, iodo e formol;
• SAF que é um fixador usado para conservar cistos e trofozoítos.

CONSERVANTES

• A proporção utilizada é de três partes de qualquer um dos conservadores para uma parte de fezes. Essa mistura deve ser bem homogeneizada.
• O formol e o MIF preservam ovos, cistos e trofozoitos para exames a fresco;
• PVA e o SAF preservam trofozoitos para coloração permanente.

Fixador Álcool Polivinílico (PVA)

Utilizada para conservar e transportar fezes líquidas. A proporção adequada é de 2 a 3 ml de fezes para 8 a 10 ml de solução de PVA.

• ***** Bicloreto de mercúrio (Solução aquosa saturada) 312 ml
• Álcool etílico a 95 % 156 ml
• Ácido acético glacial 25 ml
• ****** PVA em pó 20 g
• Glicerina 7 , 5 ml ***** Preparar o bicloreto de mercúrio dissolvendo 130 a 140 g de sal em 1000 ml de água destilada. Aqueça para dissolver, após o resfriamento filtre e estoque em uma garrafa. ****** Coloque o PVA em pó no álcool agitando lentamente. Aqueça a 75 ºC (banho Maria) e agite até que a solução fique transparente. Acrescente os outros reagentes e deixe esfriar. Guarde em um frasco fechado e use conforme a necessidade. Decante a solução sem suspender o sedimento.

MIF

• Água destilada 250 ml
• Sol. mercuriocromo a 1:500 250 ml
• Formol 25 ml
• Glicerina 5 ml MIF vem da sigla Mertiolato-Iodo-Formol

Exame de fezes

6 - Rejeitar fezes contendo meio de contraste para Raios X (sais de bário), somente colher as fezes 5 a 10 dias após a ingestão de sais de bário. 7 - Não administrar purgativos tais como: óleo mineral, óleo de castor ou supositórios, porque é impossível pesquisar protozoários.

Exame de fezes

• EXAME MACROSCÓPICO Procedimentos
• Observar a consistência da amostra.
• Fezes moles ou líquidas sugerem a possível presença de trofozoítos de protozoários intestinais. Cistos de protozoários são encontrados com mais frequência em fezes formadas. Ovos e larvas de helmintos podem ser encontrados tanto em fezes líquidas quanto em fezes formadas.
• Examinar a amostra fecal com auxílio de um palito (sorvete) para verificar a presença de outros helmintos adultos.
• Verificar presença de muco, sangue ou vermes adultos.

Exame parasitológico de fezes

• O exame pode ser quantitativo ou qualitativo.
• Os métodos quantitativos são aqueles nos quais se faz contagem de ovos para avaliação da carga parasitária.
• O mais empregado atualmente é o de Kato-Katz.
• Os métodos qualitativos são os mais utilizados para a demonstração da presença das formas parasitárias. Frequentemente o número das formas parasitárias é pequeno, assim é necessário recorrer a processos de enriquecimento dessas formas para concentrá-las.

Os principais métodos de enriquecimento

ou de concentração utilizados são:

• Sedimentação espontânea : método de Hoffmann, Pons e Janer ou método de Lutz. Este método permite o encontro de ovos e larvas de helmintos e cistos de protozoários;
• Sedimentação por centrifugação : Método de Blagg, conhecido por MIFC; Método de Ritchie, e o Coprotest. Usados para a pesquisa de cistos de protozoários e de ovos e larvas de helmintos.
• Centrífugo-flutuação : Método de Faust. Utilizado para pesquisa de cistos e oocistos de protozoários e de ovos leves.

Exame direto a fresco

1 - Colocar duas a três gotas de salina a 0 , 85 % em uma lâmina de vidro. 2 - Tocar com a ponta de um palito em vários pontos das fezes, transferindo uma pequena porção para a lâmina de microscopia. 3 - Espalhar as fezes, fazendo um esfregaço e examinar ao microscópio. A espessura do esfregaço não deve impedir a passagem de luz. 4 - Este método é indicado principalmente para a pesquisa de trofozoitos de protozoários em fezes diarreicas recém emitidas; para a identificação de cistos de protozoários e larvas de helmintos cora-se a preparação com Lugol. O uso de lamínula é facultativo.

Solução Salina ou Solução

Fisiológica

Cloreto de sódio (NaCI) 85 g 90 g Água destilada-deionizada 1.000 ml 1.000 ml Solução salina, isotônica, é o termo aplicado para todas as concentrações da solução de NaCI. Para uso biológico a concentração de 0 , 85 - 0 , 9 % (m/v).

Método de Lutz ou de Hoffmann, Pons

e Janer (sedimentação espontânea).

1 - Colocar aproximadamente 2 g de fezes em um frasco de Borrel ou em um copo plástico descartável, com cerca de 5 ml de água e dissolver bem com auxílio de um palito de sorvete descartável. 2 - Acrescentar mais 20 ml de água 3 - Coar a suspensão (para isto, usa-se gaze cirúrgica umedecida, dobrada em quatro, e colocada em um coador de plástico pequeno) num cálice cônico de 200 ml de capacidade. Os detritos retidos na gaze são lavados com mais 20 ml de água.

Método de Lutz ou de Hoffmann, Pons

e Janer (sedimentação espontânea).

4 - Completar o volume do cálice com água. 5 - Deixar essa suspensão em repouso durante duas a 24 horas. 6 - Desprezar o líquido sobrenadante cuidadosamente, homogeneizar o sedimento e coletar uma porção do mesmo. 7 - Colocar parte do sedimento numa lâmina, corar com Lugol e cobrir com lamínula (facultativo). Examinar no mínimo duas lâminas de cada amostra.