Introdução ao Diagnóstico de Infecções Intestinais por Parasitos: Entamoeba histolytica e , Notas de estudo de Diagnóstico

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Diagnóstico Parasitológico

Taís Rondello Bonatti

• Protozoários intestinais CDC, 2016

Introdução

Giardia duodenalis

• Prevalência: 8 a 30 % em países em desenvolvimento; 0 , 4 a 7 , 5 % em países desenvolvidos Cryptosporidium spp.
• 30 a 50 % das mortes por diarreia em crianças abaixo de 5 anos Entamoeba histolytica
• 50 milhões de casos e 100 mil mortes por ano 2

Introdução

• Parasitos do sangue e tecidos CDC, 2016

Leishmania spp.

• Cutânea: 700 mil a 1 , 2 milhões novos casos por ano
• Visceral: 200 mil a 400 mil novos casos por ano

Plasmodium spp.

• 2015 : 214 milhões de novos casos de malária e 438. 00 mortes 4

Introdução

• Brasil: decréscimo da prevalência (?) - muitas doenças não são de notificação obrigatória
• Aumento da consciência sobre a importância das doenças parasitárias
• Médicos: não vão realizar os exames mas precisam entender as capacidades e limitações de cada método Garcia, 2007; CDC, 2016 5

Introdução

• Necessidade do diagnóstico laboratorial
• Diagnóstico incorreto: procedimento e interpretação
• Tratamento do paciente: demonstração definitiva do agente etiológico Garcia, 2007. 7

PARASITOS INTESTINAIS

Exame parasitológico de fezes Reforçar as instruções de seguir as recomendações da coleta do material Médico Participação ativa: quem vai realizar a coleta Paciente

Colheita e preservação das amostras

• Maioria parasitos intestinais: detecção por exame de fezes
  • Outras amostras: urina, escarro, secreções urogenitais, aspirados, tecidos, conteúdo duodenal, amostras obtidas por biópsia
• Fezes eliminadas no vaso sanitário ou no solo: inadequadas Urina: destruição de trofozoítos Presença de organismos de vida livre

Colheita e preservação das amostras

• Identificação segura e correta:
• Critérios morfológicos
• Colheita adequada
• Boa preservação da amostra Fragmentos de alimentos, células vegetais, grãos de pólen, outros artefatos. 13

Colheita das amostras: Cuidados

• Fezes emitidas espontaneamente
• Detecção e identificação qualidade da amostra entregue no laboratório
• Quantidade mínima: 20 a 30 g de fezes
• Fezes pastosas ou mucosas: esfregaços corados
• Fezes formadas: técnicas de concentração
• Nunca devem ser incubadas a 37 o C ou congeladas

Colheita das amostras

• Frasco: boca larga, capacidade de 50 mL, limpos, vedados, acondicionados em plástico transparente
• Identificação do frasco:
• Nome, número de identificação, nome do médico, data e horário da colheita

Colheita das amostras

Colheita das amostras

• Amostras múltiplas
• Esquemas mais utilizados (antes de iniciar o tratamento):
• Após o tratamento:
• Protozoários: três a quatro semanas
• Helmintos: uma a duas semanas; tênia – cinco a seis semanas Três amostras em dias alternados Não ultrapassar 10 dias Seis amostras em dias alternados Não ultrapassar 14 dias

Colheita das amostras

• Fezes emitidas com o uso de laxantes
• Apenas com solicitação médica: amebíase, giardiose, estrongiloidíase
• Indicação: série de exames negativa
• Laxantes salinos: menos danos morfológicos aos parasitos
  • Fosfato de sódio, sulfato de sódio tamponado
• Fezes induzidas por purgativos devem ser totalmente colhidas e levadas imediatamente ao laboratório
• Indicada para clínicas e hospitais